Характеристика криопротекторов, используемых для долговременного хранения донорских дендритных клеток

  • Оксана Васильевна Тимохина Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси, ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск, Беларусь https://orcid.org/0000-0001-7208-1637
  • Андрей Евгеньевич Гончаров Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси, ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск, Беларусь https://orcid.org/0000-0002-4869-9864

Аннотация

Полученные из донорских моноцитов дендритные клетки перспективны для использования в лечении онкологических заболеваний. Однако имеются проблемные вопросы, лимитирующие в настоящее время их клиническое применение. Одним из таковых является протокол криоконсервации клеток с последующим восстановлением по востребованию. В целях снижения или полного исключения повреждающих факторов, действующих на клетки при замораживании, в питательную среду добавляется криопротектор. Используемые криопротекторы относятся к широкому спектру сахаров, диолов и аминокислот, которые стабилизируют биомолекулы различными способами в зависимости от их молекулярной массы и механизма действия на клетки. В работе охарактеризованы группы криопротекторов (эндо- и экзоцеллюлярные, смешанные и комбинированные), а также представлены методики криоконсервации дендритных клеток.

Биографии авторов

Оксана Васильевна Тимохина, Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси, ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск, Беларусь

младший научный сотрудник лаборатории иммунологии и клеточной биофизики

Андрей Евгеньевич Гончаров, Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси, ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск, Беларусь

кандидат медицинских наук, доцент; директор

Литература

  1. Flörcken A, Kopp J, van Lessen A, Movassaghi K, Takvorian A, Jöhrens K, et al. Allogeneic partially HLA-matched dendritic cells pulsed with autologous tumor cell lysate as a vaccine in metastatic renal cell cancer: a clinical phase I/II study. Human Vaccines and Immunotherapeutics. 2013;9(6):1217–1227. DOI: 10.4161/hv.24149.
  2. Saito S, Yanagisawa R, Yoshikawa K, Higuchi Y, Koya T, Yoshizawa K, et al. Safety and tolerability of allogeneic dendritic cell vaccination with induction of Wilms tumor 1-specific T cells in a pediatric donor and pediatric patient with relapsed leukemia: a case report and review of the literature. Cytotherapy. 2015;17(3):330–335. DOI: 10.1016/j.jcyt.2014.10.003.
  3. Laurell A, Lönnemark M, Brekkan E, Magnusson A, Tolf A, Wallgren AC, et al. Intratumorally injected pro-inflammatory allogeneic dendritic cells as immune enhancers: a first-in-human study in unfavourable risk patients with metastatic renal cell carcinoma. Journal for Immuno Therapy of Cancer. 2017;5(1):52. DOI: 10.1186/s40425-017-0255-0.
  4. Kusuma GD, Barabadi M, Tan JL, Morton DAV, Frith JE, Lim R. To protect and to preserve: novel preservation strategies for extracellular vesicles. Frontiers in Pharmacology. 2018;9:1199. DOI: 10.3389/fphar.2018.01199.
  5. Best BP. Cryoprotectant toxicity: facts, issues, and questions. Rejuvenation Research. 2015;18(5):422–436. DOI: 10.1089/rej. 2014.1656.
  6. Kostyaev АА, Utyomov SV, Andreev АА, Polezhaeva TV, Martusevich AK, Isaeva NV, et al. A four class systematization of biocryoconservants. The I class of cold preserving solutions – endocellular cryoprotectants. The Bulletin of Hematology. 2016; 12(3):28–35. Russian.
  7. Boutron P, Kaufmann A. Stability of the amorphous state in the system water-glycerol-ethylene glycol. Cryobiology. 1979; 16(1):83–89. DOI: 10.1016/0011-2240(79)90015-4.
  8. Van Blitterswijk С, De Boer J, Thomsen P, Hubbell J, Cancedda R, de Bruijn JD, et al. Tissue engineering. Amsterdam: Elsevier; 2008. 369 p.
  9. Motta JPR, Paraguassú-Braga FH, Bouzas LF, Porto LC. Evaluation of intracellular and extracellular trehalose as a cryoprotectant of stem cells obtained from umbilical cord blood. Cryobiology. 2014;68(3):343–348. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2014.04.007.
  10. Kostyaev АА, Utyomov SV, Andreev АА, Polezhaeva TV, Martusevich AK, Isaeva NV, et al. A four class systematization of biocryoconservants. The II class of cold preserving solutions – exocellular cryoprotectants. The Bulletin of Hematology. 2016;12(3):36–39. Russian.
  11. Polushina TV, Prostakova TM, Bogino NA. Antishock blood substitute on the basis of oxyethylated starch. Problemy gematologii i perelivaniya krovi. 1980;25(3):40–44.
  12. Kostyaev АА, Utyomov SV, Andreev АА, Polezhaeva TV, Martusevich AK, Isaeva NV, et al. A four class systematization of biocryoconservants. The III class of cold preserving solutions – cryoprotectants of mixed action. The Bulletin of Hematology. 2016; 12(4):4–8. Russian.
  13. Sung Yun Ha, Byung Chul Jee, Chang Suk Suh, Hee Sun Kim, Sun Kyung Oh, Seok Hyun Kim, et al. Cryopreservation of human embryonic stem cells without the use of a programmable freezer. Human Reproduction. 2005;20(7):1779–1785. DOI: 10.1093/humrep/deh854.
  14. Kostyaev АА, Utyomov SV, Andreev АА, Polezhaeva TV, Martusevich AK, Isaeva NV, et al. A four class systematization of biocryoconservants. The IV class of cold preserving solutions – combined cryoconservants. The Bulletin of Hematology. 2016;12(4):9–12. Russian.
  15. Onischenko EV, Zinchenko AV. Study of effect of some permeable cryoprotectants on microsomes using chemiluminescence method. Problems of Cryobiology. 2005;15(1):50–55. Russian.
  16. Svedentsov EP. Kriokonservanty dlya zhivykh kletok [Cryopreservatives for living cells]. Ovodov YuS, editor. Syktyvkar: Komi Scientific Center of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences; 2010. 80 p. Russian.
  17. Celluzzi CM, Welbon C. A simple cryopreservation method for dendritic cells and cells used in their derivation and functional assessment. Transfusion. 2003;43(4):488–494. DOI: 10.1046/j.1537-2995.2003.00359.x.
  18. Yoon Jeong Heo, Cheol Hun Son, Joo-Seop Chung, You-Soo Park, Jeong Hwa Son. The cryopreservation of high concentrated PBMC for dendritic cell (DC)-based cancer immunotherapy. Cryobiology. 2009;58(2):203–209. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2008.12.006.
  19. Shinde P, Khan N, Melinkeri S, Kale V, Limaye L. Freezing of dendritic cells with trehalose as an additive in the conventional freezing medium results in improved recovery after cryopreservation. Transfusion. 2019;59(2):686–696. DOI: 10.1111/trf.15028.
Опубликован
2021-10-22
Ключевые слова: дендритные клетки, донорские дендритные клетки, криопротектор
Как цитировать
Тимохина, О. В., & Гончаров, А. Е. (2021). Характеристика криопротекторов, используемых для долговременного хранения донорских дендритных клеток. Экспериментальная биология и биотехнология, 3, 102-108. https://doi.org/10.33581/2521-1722-2021-3-102-108