Фенотипическая характеристика фитопатогенных бактерий Erwinia amylovora, мутантных по гену bssS

Авторы

  • Карина Юрьевна Песоцкая Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь
  • Александр Леонидович Лагоненко Альгимед Техно, Логойский тракт, 22/1, 220090, г. Минск, Беларусь
  • Анатолий Николаевич Евтушенков Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь

Ключевые слова:

Erwinia amylovora, регулятор BssS;, подвижность клеток, формирование биопленок, краситель генциановый фиолетовый, делеция

Аннотация

Изучено влияние делеции гена белка BssS, предположительно вовлеченного в формирование биопленок, на продукцию факторов вирулентности фитопатогенными бактериями Erwinia amylovora. По сравнению с клетками дикого типа клетки бактерий E. amylovora, мутантные по гену регулятора BssS, характеризовались сниженными подвижностью и интенсивностью образования биопленок на питательных средах без глюкозы, при этом в присутствии глюкозы способность клеток делеционного мутанта к передвижению и формированию биопленок возрастала. Показано, что клетки мутантного штамма обладали повышенной чувствительностью к красителю генциановому фиолетовому.

Биографии авторов

  • Карина Юрьевна Песоцкая, Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь

    ассистент кафедры молекулярной биологии биологического факультета

  • Александр Леонидович Лагоненко, Альгимед Техно, Логойский тракт, 22/1, 220090, г. Минск, Беларусь

    кандидат биологиче­ ских наук, доцент; руководитель группы по технологии генетической и белковой инженерии

  • Анатолий Николаевич Евтушенков, Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь

    доктор биологических наук, профессор; профессор кафедры молекулярной биологии биологического факультета

Библиографические ссылки

  1. Eastgate JA. Erwinia amylovora: the molecular basis of fireblight disease. Molecular Plant Pathology. 2000;1(6):325–329. DOI: 10.1046/j.1364-3703.2000.00044.x.
  2. Dufour D, Leung V, Lévesque CM. Bacterial biofilm: structure, function, and antimicrobial resistance. Endodontic Topics. 2010; 22(1):2–16. DOI: 10.1111/j.1601-1546.2012.00277.x.
  3. Castiblanco LF, Sundin GW. New insights on molecular regulation of biofilm formation in plant-associated bacteria. Journal of Integrative Plant Biology. 2016;58(4):362–372. DOI: 10.1111/jipb.12428.
  4. Petrova OE, Sauer K. Sticky situations: key components that control bacterial surface attachment. Journal of Bacteriology. 2012;194(10):2413–2425. DOI: 10.1128/JB.00003-12.
  5. Verderosa AD, Totsika M, Fairfull-Smith KE. Bacterial biofilm eradication agents: a current review. Frontiers in Chemistry. 2019;7:824. DOI: 10.3389/fchem.2019.00824.
  6. Domka J, Lee J, Wood TK. YliH (BssR) and YceP (BssS) regulate Escherichia coli K-12 biofilm formation by influencing cell signaling. Applied and Environmental Microbiology. 2006;72(4):2449–2459. DOI: 10.1128/AEM.72.4.2449-2459.2006.
  7. Beloin C, Roux A, Ghigo J-M. Escherichia coli biofilms. In: Romeo T, editor. Bacterial biofilms. Berlin: Springer; 2008. p. 249–289 (Compans RW, Cooper MD, Honjo T, Koprowski H, Melchers F, Oldstone MBA, et al., editors. Current topics in microbiology and immunology; volume 322). DOI: 10.1007/978-3-540-75418-3_12.
  8. Gorshkov V, Kwenda S, Petrova O, Osipova E, Gogolev Yu, Moleleki LN. Global gene expression analysis of cross-protected phenotype of Pectobacterium atrosepticum. PLoS One. 2017;12(1):e0169536. DOI: 10.1371/journal.pone.0169536.
  9. Wang S, Phillippy AM, Deng K, Rui X, Li Z, Tortorello ML, et al. Transcriptomic responses of Salmonella enterica serovars Enteritidis and Typhimurium to chlorine-based oxidative stress. Applied and Environmental Microbiology. 2010;76(15):5013–5024. DOI: 10.1128/AEM.00823-10.
  10. Guilhen C, Charbonnel N, Parisot N, Gueguen N, Iltis A, Forestier C, et al. Transcriptional profiling of Klebsiella pneumoniae defines signatures for planktonic, sessile and biofilm-dispersed cells. BMC Genomics. 2016;17:237. DOI: 10.1186/s12864-016-2557-x.
  11. Sambrook J, Russell DW, editors. Molecular cloning: a laboratory manual. 3rd edition. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2001. 3 volumes.
  12. Datsenko KA, Wanner BL. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. PNAS. 2000;97(12):6640–6645. DOI: 10.1073/pnas.120163297.
  13. Johnson M, Zaretskaya I, Raytselis Ya, Merezhuk Yu, McGinnis S, Madden TL. NCBI BLAST: a better web interface. Nucleic Acids Research. 2008;36(supplement 2):W5 – W9. DOI: 10.1093/nar/gkn201.
  14. Zhao Y, Sundin GW, Wang D. Construction and analysis of pathogenicity island deletion mutants of Erwinia amylovora. Canadian Journal of Microbiology. 2009;55(4):457–464. DOI: 10.1139/w08-147.
  15. Lee JH, Zhao Y. Integration host factor is required for RpoN-dependent hrpL gene expression and controls motility by positively regulating rsmB sRNA in Erwinia amylovora. Phytopathology. 2016;106(1):29–36. DOI: 10.1094/PHYTO-07-15-0170-R.
  16. Castiblanco LF, Sundin GW. Cellulose production, activated by cyclic di-GMP through BcsA and BcsZ, is a virulence factor and an essential determinant of the three-dimensional architectures of biofilms formed by Erwinia amylovora Ea1189. Molecular Plant Pathology. 2018;19(1):90–103. DOI: 10.1111/mpp.12501.
  17. Burby PE, Simmons ZW, Schroeder JW, Simmons LA. Discovery of a dual protease mechanism that promotes DNA damage checkpoint recovery. PLoS Genetics. 2018;14(7):e1007512. DOI: 10.1371/journal.pgen.1007512.
  18. Piqué N, Miñana-Galbis D, Merino S, Tomás JM. Virulence factors of Erwinia amylovora: a review. International Journal of Molecular Sciences. 2015;16(6):12836–12854. DOI: 10.3390/ijms160612836.
  19. Adams E. The antibacterial action of crystal violet. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 1967;19(12):821–826. DOI: 10.1111/j.2042-7158.1967.tb09550.x.
  20. Gustafsson P, Nordström K, Normark S. Outer penetration barrier of Escherichia coli K-12: kinetics of the uptake of gentian violet by wild type and envelope mutants. Journal of Bacteriology. 1973;116(2):893–900. DOI: 10.1128/jb.116.2.893-900.

Загрузки

Дополнительные файлы

Опубликован

2024-11-16

Выпуск

№ 3 (2024): Экспериментальная биология и биотехнология

Раздел

Генетика и молекулярная биология

Лицензия

Авторы, публикующиеся в данном журнале, соглашаются со следующим:

  1. Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial. 4.0 International (CC BY-NC 4.0).
  2. Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся неэксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге) со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
  3. Авторы имеют право размещать их работу в интернете (например, в институтском хранилище или на персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу. (См. The Effect of Open Access).

Как цитировать

Песоцкая, К. Ю. ., Лагоненко, А. Л. ., & Евтушенков, А. Н. . (2024). Фенотипическая характеристика фитопатогенных бактерий Erwinia amylovora, мутантных по гену bssS. Экспериментальная биология и биотехнология, 3, 59-68. https://journals.bsu.by/index.php/biology/article/view/6098