Повреждение синапсов центральной нервной системы при патологиях головного мозга: мембранные механизмы и способы коррекции
Аннотация
Заболевания центральной нервной системы являются значительной медицинской и социальной проблемой. Многие из них неизлечимы или трудно поддаются фармакологической коррекции. В основе заболеваний головного мозга часто лежат дисфункции синапсов различной природы (синаптопатии), приводящие к нарушению синаптической передачи и патологической модификации нервной ткани. Для изучения функциональных свойств синапсов применяются разнообразные модельные объекты, одними из наиболее часто используемых среди которых являются синаптосомы – изолированные пресинаптические окончания, сохраняющие интактную плазматическую мембрану и большинство внутриклеточных регуляторных и энергетических систем нейрона. В представленном обзоре проанализированы результаты собственных исследований и работы ведущих научных центров мира, раскрывающие ключевые аспекты патогенеза заболеваний головного мозга, с фокусом на данные, полученные с использованием синаптосом. Проведенный анализ показал, что в основе патогенеза различных заболеваний головного мозга лежат как накопление специфических белков, так и неспецифические физико-химические факторы. Наиболее важными примерами обоих типов воздействий являются синтез амилоидных пептидов, увеличение внеклеточной концентрации глутамата и снижение рН. Эти изменения характерны как для ишемического инсульта, так и для многих нейродегенеративных заболеваний. Установлено, что внеклеточное закисление приводит к образованию активных форм кислорода в электрон-транспортной цепи синаптосомальных митохондрий, а увеличение концентрации глутамата в инкубационной среде активирует НАДФН-оксидазу плазматической мембраны синаптосом, стимулируя генерацию активных форм кислорода во внеклеточном пространстве. Гипогликемия, как осложнение сахарного диабета, ингибирует экзоцитоз в синаптосомах, что, вероятно, является защитным механизмом, а не повреждающим воздействием. Выявлен ряд факторов, которые могут быть использованы для коррекции дисфункций синапсов при заболеваниях центральной нервной системы. Так, для лечения эпилепсии может применяться кетогенная диета, когда в рационе пациентов углеводы заменяются жирами, что способствует синтезу кетоновых тел, в частности β-гидроксибутирата. С использованием синаптосом в качестве экспериментальной модели было продемонстрировано, что β-гидроксибутират ингибирует эндоцитоз, это может лежать в основе антиконвульсивного воздействия кетогенной диеты. Другим способом коррекции работы синапсов является применение ноотропных препаратов. Показано, что глицин и пирацетам, имеющие ноотропные свойства, способны индуцировать активацию пресинаптических рецепторов тормозных нейромедиаторов с последующим выходом ионов хлора из цитоплазмы и деполяризацией плазматической мембраны. Снижение порога деполяризации для высвобождения нейромедиаторов в некоторой степени объясняет ноотропное действие данных веществ. Таким образом, функционирование пресинаптического окончания нейрона можно нарушить или, наоборот, скорректировать при воздействии на специфические клеточные и мембранные мишени. Активация либо отключение идентифицированных мишеней могут быть основой терапии заболеваний головного мозга.
Литература
- Feigin VL, Vos T, Nichols E, Owolabi MO, Carroll WM, Dichgans M, et al. The global burden of neurological disorders: translating evidence into policy. The Lancet Neurology. 2020;19(3):255–265. DOI: 10.1016/S1474-4422(19)30411-9.
- Ding Chenyu, Wu Yuying, Chen Xiaoyong, Chen Yue, Wu Zanyi, Lin Zhangya, et al. Global, regional, and national burden and attributable risk factors of neurological disorders: the global burden of disease study 1990–2019. Frontiers in Public Health. 2022;10:952161. DOI: 10.3389/fpubh.2022.952161.
- Di Luca M, Olesen J. The cost of brain diseases: a burden or a challenge? Neuron. 2014;82(6):1205–1208. DOI: 10.1016/j.neuron.2014.05.044.
- Pasinelli P, Brown RH. Molecular biology of amyotrophic lateral sclerosis: insights from genetics. Nature Reviews Neuroscience. 2006;7(9):710–723. DOI: 10.1038/nrn1971.
- De Strooper B. Proteases and proteolysis in Alzheimer disease: a multifactorial view on the disease process. Physiological Reviews. 2010;90(2):465–494. DOI: 10.1152/physrev.00023.2009.
- McColgan P, Tabrizi SJ. Huntington’s disease: a clinical review. European Journal of Neurology. 2018;25(1):24–34. DOI: 10.1111/ene.13413.
- Corti O, Lesage S, Brice A. What genetics tells us about the causes and mechanisms of Parkinson’s disease. Physiological Reviews. 2011;91(4):1161–1218. DOI: 10.1152/physrev.00022.2010.
- Oertel-Knöchel V, Bittner RA, Knöchel C, Prvulovic D, Hampel H. Discovery and development of integrative biological markers for schizophrenia. Progress in Neurobiology. 2011;95(4):686–702. DOI: 10.1016/j.pneurobio.2011.05.006.
- George PM, Steinberg GK. Novel stroke therapeutics: unraveling stroke pathophysiology and its impact on clinical treatments. Neuron. 2015;87(2):297–309. DOI: 10.1016/j.neuron.2015.05.041.
- Hu K, Carroll J, Fedorovich S, Rickman C, Sukhodub A, Davletov B. Vesicular restriction of synaptobrevin suggests a role for calcium in membrane fusion. Nature. 2002;415(6872):646–650. DOI: 10.1038/415646a.
- Südhof TC. The synaptic vesicle cycle. Annual Review of Neuroscience. 2004;27:509–547. DOI: 10.1146/annurev.neuro.26.041002.131412.
- Südhof TC. Neurotransmitter release: the last millisecond in the life of a synaptic vesicle. Neuron. 2013;80(3):675–690. DOI: 10.1016/j.neuron.2013.10.022.
- Lau A, Tymianski M. Glutamate receptors, neurotoxicity and neurodegeneration. Pflügers Archiv – European Journal of Physiology. 2010;460(2):525–542. DOI: 10.1007/s00424-010-0809-1.
- Hofmeijer J, van Putten MJAM. Ischemic cerebral damage: an appraisal of synaptic failure. Stroke. 2012;43(2):607–615. DOI: 10.1161/STROKEAHA.111.632943.
- Spires-Jones TL, Hyman BT. The intersection of amyloid beta and tau at synapses in Alzheimer’s disease. Neuron. 2014;82(4):756–771. DOI: 10.1016/j.neuron.2014.05.004.
- Wilhelm BG, Mandad S, Truckenbrodt S, Kröhnert K, Schäfer C, Rammner B, et al. Composition of isolated synaptic boutons reveals the amounts of vesicle trafficking proteins. Science. 2014;344(6187):1023–1028. DOI: 10.1126/science.1252884.
- Fedorovich S, Hofmeijer J, van Putten MJAM, le Feber J. Reduced synaptic vesicle recycling during hypoxia in cultured cortical neurons. Frontiers in Cellular Neuroscience. 2017;11:32. DOI: 10.3389/fncel.2017.00032.
- Wang L-Y, Augustine GJ. Presynaptic nanodomains: a tale of two synapses. Frontiers in Cellular Neuroscience. 2014;8:455. DOI: 10.3389/fncel.2014.00455.
- Moser T, Grabner CP, Schmitz F. Sensory processing at ribbon synapses in the retina and the cochlea. Physiological Reviews. 2020;100(1):103–144. DOI: 10.1152/physrev.00026.2018.
- Hebb CO, Whittaker VP. Intracellular distributions of acetylcholine and choline acetylase. The Journal of Physiology. 1958;142(1):187–196. DOI: 10.1113/jphysiol.1958.sp006008.
- Waseem TV, Konev SV, Fedorovich SV. Influence of hypotonic shock on glutamate and GABA uptake in rat brain synaptosomes. Neurochemical Research. 2004;29(9):1653–1658. DOI: 10.1023/b:nere.0000035799.79422.d1.
- Waseem TV, Rakovich AA, Lavrukevich TV, Konev SV, Fedorovich SV. Calcium regulates the mode of exocytosis induced by hypotonic shock in isolated neuronal presynaptic endings. Neurochemistry International. 2005;46(3):235–242. DOI: 10.1016/j.neuint.2004.09.002.
- Fedorovich SV, Waseem TV, Puchkova LV. Biogenetic and morphofunctional heterogeneity of mitochondria: the case of synaptic mitochondria. Reviews in the Neurosciences. 2017;28(4):363–373. DOI: 10.1515/revneuro-2016-0077.
- Aguzzi A, Calella AM. Prions: protein aggregation and infectious diseases. Physiological Reviews. 2009;89(4):1105–1152. DOI: 10.1152/physrev.00006.2009.
- Brandon NJ, Millar JK, Korth C, Sive H, Singh KK, Sawa A. Understanding the role of DISC1 in psychiatric disease and during normal development. Journal of Neuroscience. 2009;29(41):12768–12775. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.3355-09.2009.
- Yates CM, Butterworth J, Tennant MC, Gordon A. Enzyme activities in relation to pH and lactate in postmortem brain in Alzheimer-type and other dementias. Journal of Neurochemistry. 1990;55(5):1624–1630. DOI: 10.1111/j.1471-4159.1990.tb04948.x.
- Fedorovich SV, Waseem TV. Metabolic regulation of synaptic activity. Reviews in the Neurosciences. 2018;29(8):825–835. DOI: 10.1515/revneuro-2017-0090.
- Corbyn Z. A growing global burden. Nature. 2014;510(7506):S2 – S3. DOI: 10.1038/510S2a.
- Kraig RP, Chesler M. Astrocytic acidosis in hyperglycemic and complete ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 1990;10(1):104–114. DOI: 10.1038/jcbfm.1990.13.
- Wemmie JA, Taugher RJ, Kreple CJ. Acid-sensing ion channels in pain and disease. Nature Reviews Neuroscience. 2013;14(7):461–471. DOI: 10.1038/nrn3529.
- Choi DW. Excitotoxicity: still hammering the ischemic brain in 2020. Frontiers in Neuroscience. 2020;14:579953. DOI: 10.3389/fnins.2020.579953.
- Fedorovich SV, Dubouskaya TG, Waseem TV. Synaptic receptors for low pH in extracellular space: metabotropic receptors are an underestimated factor in stroke. Neural Regeneration Research. 2020;15(11):2033–2034. DOI: 10.4103/1673-5374.282249.
- Zha X-M, Xiong Z-G, Simon RP. pH and proton-sensitive receptors in brain ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 2022;42(8):1349–1363. DOI: 10.1177/0271678X221089074.
- Ludwig M-G, Vanek M, Guerini D, Gasser JA, Jones CE, Junker U, et al. Proton-sensing G-protein-coupled receptors. Nature. 2003;425(6953):93–98. DOI: 10.1038/nature01905.
- Pekun TG, Lemeshchenko VV, Lyskova TI, Waseem TV, Fedorovich SV. Influence of intra- and extracellular acidification on free radical formation and mitochondria membrane potential in rat brain synaptosomes. Journal of Molecular Neuroscience. 2013;49(1):211–222. DOI: 10.1007/s12031-012-9913-3.
- Dubouskaya TG, Hrynevich SV, Waseem TV, Fedorovich SV. Calcium release from intracellular stores is involved in mitochondria depolarization after lowering extracellular pH in rat brain synaptosomes. Acta Neurobiologiæ Experimentalis. 2018;78(4):343–352. DOI: 10.21307/ane-2018-033.
- Keating DJ. Mitochondrial dysfunction, oxidative stress, regulation of exocytosis and their relevance to neurodegenerative diseases. Journal of Neurochemistry. 2008;104(2):298–305. DOI: 10.1111/j.1471-4159.2007.04997.x.
- Reynolds IJ, Hastings TG. Glutamate induces the production of reactive oxygen species in cultured forebrain neurons following NMDA receptor activation. The Journal of Neuroscience. 1995;15(5):3318–3327. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.15-05-03318.1995.
- Brennan AM, Suh SW, Won SJ, Narasimhan P, Kauppinen TM, Lee H, et al. NADPH oxidase is the primary source of superoxide induced by NMDA receptor activation. Nature Neuroscience. 2009;12(7):857–863. DOI: 10.1038/nn.2334.
- Alekseenko AV, Lemeshchenko VV, Pekun TG, Waseem TV, Fedorovich SV. Glutamate-induced free radical formation in rat brain synaptosomes is not dependent on intrasynaptosomal mitochondria membrane potential. Neuroscience Letters. 2012;513(2):238–242. DOI: 10.1016/j.neulet.2012.02.051.
- Bouron A. Modulation of spontaneous quantal release of neurotransmitters in the hippocampus. Progress in Neurobiology. 2001;63(6):613–635. DOI: 10.1016/s0301-0082(00)00053-8.
- Waseem TV, Lapatsina LP, Fedorovich SV. Influence of integrin-blocking peptide on gadolinium- and hypertonic shrinkinginduced neurotransmitter release in rat brain synaptosomes. Neurochemical Research. 2008;33(7):1316–1324. DOI: 10.1007/s11064-007-9585-5.
- Waseem TV, Kolos VA, Lapatsina LP, Fedorovich SV. Influence of cholesterol depletion in plasma membrane of rat brain synaptosomes on calcium-dependent and calcium-independent exocytosis. Neuroscience Letters. 2006;405(1–2):106–110. DOI: 10.1016/j.neulet.2006.06.029.
- Harris JJ, Jolivet R, Attwell D. Synaptic energy use and supply. Neuron. 2012;75:762–777. DOI: 10.1016/j.neuron.2012.08.019.
- Languren G, Montiel T, Julio-Amilpas A, Massieu L. Neuronal damage and cognitive impairment associated with hypoglycemia: an integrated view. Neurochemistry International. 2013;63(4):331–343. DOI: 10.1016/j.neuint.2013.06.018.
- Hrynevich SV, Pekun TG, Waseem TV, Fedorovich SV. Influence of glucose deprivation on membrane potentials of plasma membranes, mitochondria and synaptic vesicles in rat brain synaptosomes. Neurochemical Research. 2015;40(6):1188–1196. DOI: 10.1007/s11064-015-1579-0.
- Gano LB, Patel M, Rho JM. Ketogenic diets, mitochondria, and neurological diseases. Journal of Lipid Research. 2014;55(11):2211–2228. DOI: 10.1194/jlr.R048975.
- Fedorovich SV, Voronina PP, Waseem TV. Ketogenic diet versus ketoacidosis: what determines the influence of ketone bodies on neurons? Neural Regeneration Research. 2018;13(12):2060–2063. DOI: 10.4103/1673-5374.241442.
- Hrynevich SV, Waseem TV, Hébert A, Pellerin L, Fedorovich SV. β-Hydroxybutyrate supports synaptic vesicle cycling but reduces endocytosis and exocytosis in rat brain synaptosomes. Neurochemistry International. 2016;93:73–81. DOI: 10.1016/j.neuint.2015.12.014.
- Kanikarla-Marie P, Jain SK. Hyperketonemia and ketosis increase the risk of complications in type 1 diabetes. Free Radical Biology and Medicine. 2016;95:268–277. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2016.03.020.
- Voronina PP, Adamovich KV, Adamovich TV, Dubouskaya TG, Hrynevich SV, Waseem TV, et al. High concentration of ketone body β-hydroxybutyrate modifies synaptic vesicle cycle and depolarizes plasma membrane of rat brain synaptosomes. Journal of Molecular Neuroscience. 2020;70(1):112–119. DOI: 10.1007/s12031-019-01406-9.
- Lovinger DM, Mateo Y, Johnson KA, Engi SA, Antonazzo M, Cheer JF. Local modulation by presynaptic receptors controls neuronal communication and behaviour. Nature Reviews Neuroscience. 2022;23(4):191–203. DOI: 10.1038/s41583-022-00561-0.
- Ben-Ari Y, Gaiarsa J-L, Tyzio R, Khazipov R. GABA: a pioneer transmitter that excites immature neurons and generates primitive oscillations. Physiological Reviews. 2007;87(4):1215–1284. DOI: 10.1152/physrev.00017.2006.
- Waseem TV, Fedorovich SV. Presynaptic glycine receptors influence plasma membrane potential and glutamate release. Neurochemical Research. 2010;35(8):1188–1195. DOI: 10.1007/s11064-010-0174-7.
- Fedorovich SV. Piracetam induces plasma membrane depolarization in rat brain synaptosomes. Neuroscience Letters. 2013;553:206–210. DOI: 10.1016/j.neulet.2013.08.045.
- Malík M, Tlustoš P. Nootropic as cognitive enhancers: types, dosage and side effects of smart drugs. Nutrients. 2022;14(16):3367. DOI: 10.3390/nu14163367.
- File SE, Fluck E, Fernandes C. Beneficial effects of glycine (Bioglycin) on memory and attention in young and middle-aged adults. Journal of Clinical Psychopharmacology. 1999;19(6):506–512. DOI: 10.1097/00004714-199912000-00004.
Copyright (c) 2023 Экспериментальная биология и биотехнология

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.
Авторы, публикующиеся в данном журнале, соглашаются со следующим:
- Авторы сохраняют за собой авторские права на работу и предоставляют журналу право первой публикации работы на условиях лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial. 4.0 International (CC BY-NC 4.0).
- Авторы сохраняют право заключать отдельные контрактные договоренности, касающиеся неэксклюзивного распространения версии работы в опубликованном здесь виде (например, размещение ее в институтском хранилище, публикацию в книге) со ссылкой на ее оригинальную публикацию в этом журнале.
- Авторы имеют право размещать их работу в интернете (например, в институтском хранилище или на персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу. (См. The Effect of Open Access).