Повреждение синапсов центральной нервной системы при патологиях головного мозга: мембранные механизмы и способы коррекции

  • Сергей Викторович Федорович Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь
  • Вадим Викторович Демидчик Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь

Аннотация

Заболевания центральной нервной системы являются значительной медицинской и социальной проблемой. Многие из них неизлечимы или трудно поддаются фармакологической коррекции. В основе заболеваний головного мозга часто лежат дисфункции синапсов различной природы (синаптопатии), приводящие к нарушению синаптической передачи и патологической модификации нервной ткани. Для изучения функциональных свойств синапсов применяются разнообразные модельные объекты, одними из наиболее часто используемых среди которых являются синаптосомы – изолированные пресинаптические окончания, сохраняющие интактную плазматическую мембрану и большинство внутриклеточных регуляторных и энергетических систем нейрона. В представленном обзоре проанализированы результаты собственных исследований и работы ведущих научных центров мира, раскрывающие ключевые аспекты патогенеза заболеваний головного мозга, с фокусом на данные, полученные с использованием синаптосом. Проведенный анализ показал, что в основе патогенеза различных заболеваний головного мозга лежат как накопление специфических белков, так и неспецифические физико-химические факторы. Наиболее важными примерами обоих типов воздействий являются синтез амилоидных пептидов, увеличение внеклеточной концентрации глутамата и снижение рН. Эти изменения характерны как для ишемического инсульта, так и для многих нейродегенеративных заболеваний. Установлено, что внеклеточное закисление приводит к образованию активных форм кислорода в электрон-транспортной цепи синаптосомальных митохондрий, а увеличение концентрации глутамата в инкубационной среде активирует НАДФН-оксидазу плазматической мембраны синаптосом, стимулируя генерацию активных форм кислорода во внеклеточном пространстве. Гипогликемия, как осложнение сахарного диабета, ингибирует экзоцитоз в синаптосомах, что, вероятно, является защитным механизмом, а не повреждающим воздействием. Выявлен ряд факторов, которые могут быть использованы для коррекции дисфункций синапсов при заболеваниях центральной нервной системы. Так, для лечения эпилепсии может применяться кетогенная диета, когда в рационе пациентов углеводы заменяются жирами, что способствует синтезу кетоновых тел, в частности β-гидроксибутирата. С использованием синаптосом в качестве экспериментальной модели было продемонстрировано, что β-гидроксибутират ингибирует эндоцитоз, это может лежать в основе антиконвульсивного воздействия кетогенной диеты. Другим способом коррекции работы синапсов является применение ноотропных препаратов. Показано, что глицин и пирацетам, имеющие ноотропные свойства, способны индуцировать активацию пресинаптических рецепторов тормозных нейромедиаторов с последующим выходом ионов хлора из цитоплазмы и деполяризацией плазматической мембраны. Снижение порога деполяризации для высвобождения нейромедиаторов в некоторой степени объясняет ноотропное действие данных веществ. Таким образом, функционирование пресинаптического окончания нейрона можно нарушить или, наоборот, скорректировать при воздействии на специфические клеточные и мембранные мишени. Активация либо отключение идентифицированных мишеней могут быть основой терапии заболеваний головного мозга.

Биографии авторов

Сергей Викторович Федорович, Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь

кандидат биологических наук, доцент; доцент кафедры биохимии биологического факультета

Вадим Викторович Демидчик, Белорусский государственный университет, пр. Независимости, 4, 220030, г. Минск, Беларусь

доктор биологических наук, член-корреспондент НАН Беларуси, доцент; декан биологического факультета

Литература

  1. Feigin VL, Vos T, Nichols E, Owolabi MO, Carroll WM, Dichgans M, et al. The global burden of neurological disorders: translating evidence into policy. The Lancet Neurology. 2020;19(3):255–265. DOI: 10.1016/S1474-4422(19)30411-9.
  2. Ding Chenyu, Wu Yuying, Chen Xiaoyong, Chen Yue, Wu Zanyi, Lin Zhangya, et al. Global, regional, and national burden and attributable risk factors of neurological disorders: the global burden of disease study 1990–2019. Frontiers in Public Health. 2022;10:952161. DOI: 10.3389/fpubh.2022.952161.
  3. Di Luca M, Olesen J. The cost of brain diseases: a burden or a challenge? Neuron. 2014;82(6):1205–1208. DOI: 10.1016/j.neuron.2014.05.044.
  4. Pasinelli P, Brown RH. Molecular biology of amyotrophic lateral sclerosis: insights from genetics. Nature Reviews Neuroscience. 2006;7(9):710–723. DOI: 10.1038/nrn1971.
  5. De Strooper B. Proteases and proteolysis in Alzheimer disease: a multifactorial view on the disease process. Physiological Reviews. 2010;90(2):465–494. DOI: 10.1152/physrev.00023.2009.
  6. McColgan P, Tabrizi SJ. Huntington’s disease: a clinical review. European Journal of Neurology. 2018;25(1):24–34. DOI: 10.1111/ene.13413.
  7. Corti O, Lesage S, Brice A. What genetics tells us about the causes and mechanisms of Parkinson’s disease. Physiological Reviews. 2011;91(4):1161–1218. DOI: 10.1152/physrev.00022.2010.
  8. Oertel-Knöchel V, Bittner RA, Knöchel C, Prvulovic D, Hampel H. Discovery and development of integrative biological markers for schizophrenia. Progress in Neurobiology. 2011;95(4):686–702. DOI: 10.1016/j.pneurobio.2011.05.006.
  9. George PM, Steinberg GK. Novel stroke therapeutics: unraveling stroke pathophysiology and its impact on clinical treatments. Neuron. 2015;87(2):297–309. DOI: 10.1016/j.neuron.2015.05.041.
  10. Hu K, Carroll J, Fedorovich S, Rickman C, Sukhodub A, Davletov B. Vesicular restriction of synaptobrevin suggests a role for calcium in membrane fusion. Nature. 2002;415(6872):646–650. DOI: 10.1038/415646a.
  11. Südhof TC. The synaptic vesicle cycle. Annual Review of Neuroscience. 2004;27:509–547. DOI: 10.1146/annurev.neuro.26.041002.131412.
  12. Südhof TC. Neurotransmitter release: the last millisecond in the life of a synaptic vesicle. Neuron. 2013;80(3):675–690. DOI: 10.1016/j.neuron.2013.10.022.
  13. Lau A, Tymianski M. Glutamate receptors, neurotoxicity and neurodegeneration. Pflügers Archiv – European Journal of Physiology. 2010;460(2):525–542. DOI: 10.1007/s00424-010-0809-1.
  14. Hofmeijer J, van Putten MJAM. Ischemic cerebral damage: an appraisal of synaptic failure. Stroke. 2012;43(2):607–615. DOI: 10.1161/STROKEAHA.111.632943.
  15. Spires-Jones TL, Hyman BT. The intersection of amyloid beta and tau at synapses in Alzheimer’s disease. Neuron. 2014;82(4):756–771. DOI: 10.1016/j.neuron.2014.05.004.
  16. Wilhelm BG, Mandad S, Truckenbrodt S, Kröhnert K, Schäfer C, Rammner B, et al. Composition of isolated synaptic boutons reveals the amounts of vesicle trafficking proteins. Science. 2014;344(6187):1023–1028. DOI: 10.1126/science.1252884.
  17. Fedorovich S, Hofmeijer J, van Putten MJAM, le Feber J. Reduced synaptic vesicle recycling during hypoxia in cultured cortical neurons. Frontiers in Cellular Neuroscience. 2017;11:32. DOI: 10.3389/fncel.2017.00032.
  18. Wang L-Y, Augustine GJ. Presynaptic nanodomains: a tale of two synapses. Frontiers in Cellular Neuroscience. 2014;8:455. DOI: 10.3389/fncel.2014.00455.
  19. Moser T, Grabner CP, Schmitz F. Sensory processing at ribbon synapses in the retina and the cochlea. Physiological Reviews. 2020;100(1):103–144. DOI: 10.1152/physrev.00026.2018.
  20. Hebb CO, Whittaker VP. Intracellular distributions of acetylcholine and choline acetylase. The Journal of Physiology. 1958;142(1):187–196. DOI: 10.1113/jphysiol.1958.sp006008.
  21. Waseem TV, Konev SV, Fedorovich SV. Influence of hypotonic shock on glutamate and GABA uptake in rat brain synaptosomes. Neurochemical Research. 2004;29(9):1653–1658. DOI: 10.1023/b:nere.0000035799.79422.d1.
  22. Waseem TV, Rakovich AA, Lavrukevich TV, Konev SV, Fedorovich SV. Calcium regulates the mode of exocytosis induced by hypotonic shock in isolated neuronal presynaptic endings. Neurochemistry International. 2005;46(3):235–242. DOI: 10.1016/j.neuint.2004.09.002.
  23. Fedorovich SV, Waseem TV, Puchkova LV. Biogenetic and morphofunctional heterogeneity of mitochondria: the case of synaptic mitochondria. Reviews in the Neurosciences. 2017;28(4):363–373. DOI: 10.1515/revneuro-2016-0077.
  24. Aguzzi A, Calella AM. Prions: protein aggregation and infectious diseases. Physiological Reviews. 2009;89(4):1105–1152. DOI: 10.1152/physrev.00006.2009.
  25. Brandon NJ, Millar JK, Korth C, Sive H, Singh KK, Sawa A. Understanding the role of DISC1 in psychiatric disease and during normal development. Journal of Neuroscience. 2009;29(41):12768–12775. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.3355-09.2009.
  26. Yates CM, Butterworth J, Tennant MC, Gordon A. Enzyme activities in relation to pH and lactate in postmortem brain in Alzheimer-type and other dementias. Journal of Neurochemistry. 1990;55(5):1624–1630. DOI: 10.1111/j.1471-4159.1990.tb04948.x.
  27. Fedorovich SV, Waseem TV. Metabolic regulation of synaptic activity. Reviews in the Neurosciences. 2018;29(8):825–835. DOI: 10.1515/revneuro-2017-0090.
  28. Corbyn Z. A growing global burden. Nature. 2014;510(7506):S2 – S3. DOI: 10.1038/510S2a.
  29. Kraig RP, Chesler M. Astrocytic acidosis in hyperglycemic and complete ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 1990;10(1):104–114. DOI: 10.1038/jcbfm.1990.13.
  30. Wemmie JA, Taugher RJ, Kreple CJ. Acid-sensing ion channels in pain and disease. Nature Reviews Neuroscience. 2013;14(7):461–471. DOI: 10.1038/nrn3529.
  31. Choi DW. Excitotoxicity: still hammering the ischemic brain in 2020. Frontiers in Neuroscience. 2020;14:579953. DOI: 10.3389/fnins.2020.579953.
  32. Fedorovich SV, Dubouskaya TG, Waseem TV. Synaptic receptors for low pH in extracellular space: metabotropic receptors are an underestimated factor in stroke. Neural Regeneration Research. 2020;15(11):2033–2034. DOI: 10.4103/1673-5374.282249.
  33. Zha X-M, Xiong Z-G, Simon RP. pH and proton-sensitive receptors in brain ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 2022;42(8):1349–1363. DOI: 10.1177/0271678X221089074.
  34. Ludwig M-G, Vanek M, Guerini D, Gasser JA, Jones CE, Junker U, et al. Proton-sensing G-protein-coupled receptors. Nature. 2003;425(6953):93–98. DOI: 10.1038/nature01905.
  35. Pekun TG, Lemeshchenko VV, Lyskova TI, Waseem TV, Fedorovich SV. Influence of intra- and extracellular acidification on free radical formation and mitochondria membrane potential in rat brain synaptosomes. Journal of Molecular Neuroscience. 2013;49(1):211–222. DOI: 10.1007/s12031-012-9913-3.
  36. Dubouskaya TG, Hrynevich SV, Waseem TV, Fedorovich SV. Calcium release from intracellular stores is involved in mitochondria depolarization after lowering extracellular pH in rat brain synaptosomes. Acta Neurobiologiæ Experimentalis. 2018;78(4):343–352. DOI: 10.21307/ane-2018-033.
  37. Keating DJ. Mitochondrial dysfunction, oxidative stress, regulation of exocytosis and their relevance to neurodegenerative diseases. Journal of Neurochemistry. 2008;104(2):298–305. DOI: 10.1111/j.1471-4159.2007.04997.x.
  38. Reynolds IJ, Hastings TG. Glutamate induces the production of reactive oxygen species in cultured forebrain neurons following NMDA receptor activation. The Journal of Neuroscience. 1995;15(5):3318–3327. DOI: 10.1523/JNEUROSCI.15-05-03318.1995.
  39. Brennan AM, Suh SW, Won SJ, Narasimhan P, Kauppinen TM, Lee H, et al. NADPH oxidase is the primary source of superoxide induced by NMDA receptor activation. Nature Neuroscience. 2009;12(7):857–863. DOI: 10.1038/nn.2334.
  40. Alekseenko AV, Lemeshchenko VV, Pekun TG, Waseem TV, Fedorovich SV. Glutamate-induced free radical formation in rat brain synaptosomes is not dependent on intrasynaptosomal mitochondria membrane potential. Neuroscience Letters. 2012;513(2):238–242. DOI: 10.1016/j.neulet.2012.02.051.
  41. Bouron A. Modulation of spontaneous quantal release of neurotransmitters in the hippocampus. Progress in Neurobiology. 2001;63(6):613–635. DOI: 10.1016/s0301-0082(00)00053-8.
  42. Waseem TV, Lapatsina LP, Fedorovich SV. Influence of integrin-blocking peptide on gadolinium- and hypertonic shrinkinginduced neurotransmitter release in rat brain synaptosomes. Neurochemical Research. 2008;33(7):1316–1324. DOI: 10.1007/s11064-007-9585-5.
  43. Waseem TV, Kolos VA, Lapatsina LP, Fedorovich SV. Influence of cholesterol depletion in plasma membrane of rat brain synaptosomes on calcium-dependent and calcium-independent exocytosis. Neuroscience Letters. 2006;405(1–2):106–110. DOI: 10.1016/j.neulet.2006.06.029.
  44. Harris JJ, Jolivet R, Attwell D. Synaptic energy use and supply. Neuron. 2012;75:762–777. DOI: 10.1016/j.neuron.2012.08.019.
  45. Languren G, Montiel T, Julio-Amilpas A, Massieu L. Neuronal damage and cognitive impairment associated with hypoglycemia: an integrated view. Neurochemistry International. 2013;63(4):331–343. DOI: 10.1016/j.neuint.2013.06.018.
  46. Hrynevich SV, Pekun TG, Waseem TV, Fedorovich SV. Influence of glucose deprivation on membrane potentials of plasma membranes, mitochondria and synaptic vesicles in rat brain synaptosomes. Neurochemical Research. 2015;40(6):1188–1196. DOI: 10.1007/s11064-015-1579-0.
  47. Gano LB, Patel M, Rho JM. Ketogenic diets, mitochondria, and neurological diseases. Journal of Lipid Research. 2014;55(11):2211–2228. DOI: 10.1194/jlr.R048975.
  48. Fedorovich SV, Voronina PP, Waseem TV. Ketogenic diet versus ketoacidosis: what determines the influence of ketone bodies on neurons? Neural Regeneration Research. 2018;13(12):2060–2063. DOI: 10.4103/1673-5374.241442.
  49. Hrynevich SV, Waseem TV, Hébert A, Pellerin L, Fedorovich SV. β-Hydroxybutyrate supports synaptic vesicle cycling but reduces endocytosis and exocytosis in rat brain synaptosomes. Neurochemistry International. 2016;93:73–81. DOI: 10.1016/j.neuint.2015.12.014.
  50. Kanikarla-Marie P, Jain SK. Hyperketonemia and ketosis increase the risk of complications in type 1 diabetes. Free Radical Biology and Medicine. 2016;95:268–277. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2016.03.020.
  51. Voronina PP, Adamovich KV, Adamovich TV, Dubouskaya TG, Hrynevich SV, Waseem TV, et al. High concentration of ketone body β-hydroxybutyrate modifies synaptic vesicle cycle and depolarizes plasma membrane of rat brain synaptosomes. Journal of Molecular Neuroscience. 2020;70(1):112–119. DOI: 10.1007/s12031-019-01406-9.
  52. Lovinger DM, Mateo Y, Johnson KA, Engi SA, Antonazzo M, Cheer JF. Local modulation by presynaptic receptors controls neuronal communication and behaviour. Nature Reviews Neuroscience. 2022;23(4):191–203. DOI: 10.1038/s41583-022-00561-0.
  53. Ben-Ari Y, Gaiarsa J-L, Tyzio R, Khazipov R. GABA: a pioneer transmitter that excites immature neurons and generates primitive oscillations. Physiological Reviews. 2007;87(4):1215–1284. DOI: 10.1152/physrev.00017.2006.
  54. Waseem TV, Fedorovich SV. Presynaptic glycine receptors influence plasma membrane potential and glutamate release. Neurochemical Research. 2010;35(8):1188–1195. DOI: 10.1007/s11064-010-0174-7.
  55. Fedorovich SV. Piracetam induces plasma membrane depolarization in rat brain synaptosomes. Neuroscience Letters. 2013;553:206–210. DOI: 10.1016/j.neulet.2013.08.045.
  56. Malík M, Tlustoš P. Nootropic as cognitive enhancers: types, dosage and side effects of smart drugs. Nutrients. 2022;14(16):3367. DOI: 10.3390/nu14163367.
  57. File SE, Fluck E, Fernandes C. Beneficial effects of glycine (Bioglycin) on memory and attention in young and middle-aged adults. Journal of Clinical Psychopharmacology. 1999;19(6):506–512. DOI: 10.1097/00004714-199912000-00004.
Опубликован
2023-11-08
Ключевые слова: головной мозг, синапсы, синаптосомы, кетогенная диета, ноотропные препараты, гипогликемия
Поддерживающие организации Работа выполнена при поддержке гранта ректора БГУ (на имя С. В. Федоровича). Авторы признательны студентке биологического факультета К. П. Кепель за помощь в подготовке рисунка.
Как цитировать
Федорович, С. В., & Демидчик, В. В. (2023). Повреждение синапсов центральной нервной системы при патологиях головного мозга: мембранные механизмы и способы коррекции. Экспериментальная биология и биотехнология, 3, 4-11. https://doi.org/10.33581/2957-5060-2023-3-4-11